Đánh giá đặc điểm chất lượng tế bào gốc trung mô mô mỡ thu thập tại Bệnh viện Bưu Điện
Nội dung chính của bài viết
Tóm tắt
Mô mỡ là nguồn cung cấp tế bào gốc trung mô dồi dào cho y học. Tuy nhiên, trong quá trình thu thập xử lý mẫu luôn có tiềm ẩn nguy cơ nhiễm khuẩn, tế bào bị biến đổi hoặc chất lượng mẫu không tốt ảnh hưởng tới quá trình sử dụng về sau. Nghiên cứu này được thực hiện nhằm đánh giá chất lượng tế bào gốc trung mô mô mỡ thu thập tại Bệnh viện Bưu Điện. Kết quả thu thập tế bào gốc trung mô từ 20 mẫu mô mỡ cho thấy tỷ lệ tế bào sống đạt 99%, xét nghiệm vi sinh ghi nhận 1 mẫu có kết quả dương tính với vi khuẩn, không có mẫu nào dương tính với vi nấm, mycoplasma. Tỷ lệ marker bề mặt CD105+, CD73+, CD90+ đều trên 97% và marker âm tính trung bình là 2,06 ± 1,4%. Xét nghiệm nhiễm sắc thể từ tế bào gốc trung mô qua các lần cấy chuyển ghi nhận không có biến đổi về số lượng và cấu trúc. Kết quả nghiên cứu có ý nghĩa quan trọng trong lưu trữ tế bào gốc, ứng dụng tế bào gốc trong điều trị.
Chi tiết bài viết
Từ khóa
Mô mỡ, lưu trữ tế bào gốc, chất lượng tế bào gốc mô mỡ
Tài liệu tham khảo
2. Mushahary D, Spittler A, Kasper C, et al. Isolation, cultivation, and characterization of human mesenchymal stem cells. Cytom Part J Int Soc Anal Cytol. 2018;93(1):19-31. doi:10.1002/cyto.a.23242
3. Sylwia Dabrowska, Anna Andrzejewska, Miroslaw Janowski, et al. Immunomodulatory and Regenerative Effects of Mesenchymal Stem Cells and Extracellular Vesicles: Therapeutic Outlook for Inflammatory and Degenerative Diseases. Front Immunol. 2020;11:591065. doi: 10.3389/fimmu.2020.591065.
4. Yang G, Fan X, Liu Y, et al. Immunomodulatory Mechanisms and Therapeutic Potential of Mesenchymal Stem Cells. Stem Cell Rev Rep. 2023;19(5):1214-1231. doi:10.1007/s12015-023-10539-9
5. Moon KM, Park YH, Lee JS, et al. The Effect of Secretory Factors of Adipose-Derived Stem Cells on Human Keratinocytes. Int J Mol Sci. 2012;13(1):1239-1257. doi:10.3390/ijms13011239
6. Aust L, Devlin B, Foster SJ, et al. Yield of human adipose-derived adult stem cells from liposuction aspirates. Cytotherapy. 2004;6(1):7-14. doi:10.1080/14653240310004539
7. Yaylacı S, Kaçaroğlu D, Hürkal Ö, et al. An enzyme-free technique enables the isolation of a large number of adipose-derived stem cells at the bedside. Sci Rep. 2023;13(1):8005. doi:10.1038/s41598-023-34915-0
8. Abraham M, Kori I, Vishwakarma U, et al. Comprehensive assessment of goat adipose tissue-derived mesenchymal stem cells cultured in different media. Sci Rep. 2024;14(1):8380. doi:10.1038/s41598-024-58465-1
9. Debnath T, Chelluri LK. Standardization and quality assessment for clinical grade mesenchymal stem cells from human adipose tissue. Hematol Transfus Cell Ther. 2019;41:7-16. doi:10.1016/j.htct.2018.05.001
10. Bourin P, Bunnell Ba, Casteilla L, et al. Stromal cells from the adipose tissue-derived stromal vascular fraction and culture expanded adipose tissue-derived stromal/stem cells: A joint statement of the International Federation for Adipose Therapeutics (IFATS) and Science and the International Society for Cellular Therapy (ISCT). Cytotherapy. 2013;15(6):641-648. doi:10.1016/j.jcyt.2013.02.006
11. Dominici M, Le Blanc K, Mueller I, et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 2006;8(4):315-317. doi:10.1080/14653240600855905
12. Vériter S, André W, Aouassar N, et al. Human Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells in Cell Therapy: Safety and Feasibility in Different “Hospital Exemption” Clinical Applications. PLOS ONE. 2015;10(10):e0139566. doi:10.1371/journal.pone.0139566