Kết quả thu hoạch khối tế bào gốc tạo máu ngoại vi ở bệnh nhi u nguyên bào thần kinh
Nội dung chính của bài viết
Tóm tắt
U nguyên bào thần kinh là khối u đặc ngoài sọ phổ biến nhất ở trẻ em. Nhóm nguy cơ cao của bệnh là một trong những thể bệnh khó điều trị nhất, có tiên lượng kém. Trong phác đồ điều trị, ghép tế bào gốc tạo máu tự thân sau hóa chất liều cao giúp tái tạo hệ thống sinh máu và phục hồi chức năng tủy xương ở nhóm bệnh nhân này. Nghiên cứu được thực hiện với mục tiêu mô tả kết quả quá trình thu hoạch khối tế bào gốc tạo máu ngoại vi hỗ trợ điều trị bệnh u nguyên bào thần kinh ở trẻ em. Phương pháp mô tả cắt ngang trên 57 bệnh nhân chẩn đoán u nguyên bào thần kinh nguy cơ cao được thu hoạch tế bào gốc tạo máu ngoại vi tự thân tại Bệnh viện Nhi Trung ương. Kết quả cho thấy, trước thời điểm gạn tách máu ngoại vi của bệnh nhân có số lượng bạch cầu trung vị là 20,04×109/L (IQR 13,33 – 26,87), mật độ tế bào gốc CD34+ trung vị là 32 tế bào/µL (IQR 18,72 – 48,53) và có tương quan thuận có ý nghĩa thống kê với số lượng bạch cầu mono. Khối tế bào gốc tạo máu ngoại vi có số lượng tổng tế bào có nhân, tế bào gốc tạo máu CD34+ với trung vị lần lượt là 29,35 × 109 tế bào (IQR 19,39 – 38,41 và 84,25 × 106 tế bào (IQR 54,54 – 136,99). Liều tế bào gốc tạo máu CD34+ là 6,29×106 tế bào/kg (IQR 4,43 – 9,04). Các khối tế bào gốc máu ngoại vi tự thân đảm bảo vô khuẩn và đạt yêu cầu về số lượng, mật độ và liều tế bào gốc tạo máu CD34+ mục tiêu sử dụng trong liệu pháp hỗ trợ điều trị cho bệnh nhân u nguyên bào thần kinh nguy cơ cao.
Chi tiết bài viết
Từ khóa
U nguyên bào thần kinh, ghép tế bào gốc tạo máu tự thân, Bệnh viện Nhi Trung ương
Tài liệu tham khảo
2. Park JR, Kreissman SG, London WB, et al. Effect of tandem autologous stem cell transplant vs single transplant on event-free survival in patients with high-risk neuroblastoma: a randomized clinical trial. JAMA. 2019; 322(8): 746-755. doi:10.1001/jama.2019.11642.
3. Karow A, Wilhelm A, Ammann RA, Baerlocher GM, Pabst T, Mansouri Taleghani B, et al. Peripheral blood progenitor cell collection in pediatric patients optimized by high pre-apheresis count of circulating CD34+ cells and high blood flow. Bone Marrow Transplant. 2019; 54(6): 885-893. doi:10.1038/s41409-018-0382-4.
4. Grupp SA, Cohn SL, Wall D, Reynolds CP; Hematopoietic Stem Cell Transplant Discipline and the Neuroblastoma Disease Committee, Children’s Oncology Group. Collection, storage, and infusion of stem cells in children with high-risk neuroblastoma: saving for a rainy day. Pediatr Blood Cancer. 2006; 46(7): 719-722. doi:10.1002/pbc.20769.
5. Lee CY, Yu TY, Lin FL, Hung GY, Hou MH, Ho CY, Liu CY, Chiou TJ, Yen HJ. Peripheral blood stem cell harvesting in young children weighing less than 15 kg: a single-institute experience in Taiwan. Cytotherapy. 2024; 26(10): 1201-1209. doi:10.1016/j.jcyt.2024.05.008.
6. Melve GK, Ersvaer E, Eide GE, Kristoffersen EK, Bruserud Ø. Peripheral blood stem cell mobilization in healthy donors by granulocyte colony-stimulating factor causes preferential mobilization of lymphocyte subsets. Front Immunol. 2018; 9: 845. doi:10.3389/fimmu.2018.00845.
7. Kilpeläinen L, Nikkilä A, Lohi O. Pre-harvest CD34+ cell counts predicted peripheral blood stem cell collection yields. Acta Paediatr. 2023; 112(10): 1999-2005. doi:10.1111/apa.16879.
8. Park SD, Saunders AS, Reidy MA, Bender DE, Clifton S, Morris KT. A review of granulocyte colony-stimulating factor receptor signaling and regulation with implications for cancer. Front Oncol. 2022; 12: 932608. doi:10.3389/fonc.2022.932608.
9. Bendall LJ, Bradstock KF. G-CSF: from granulopoietic stimulant to bone marrow stem cell mobilizing agent. Cytokine Growth Factor Rev. 2014; 25(4): 355-367. doi:10.1016/j.cytogfr.2014.07.011.
10. Martino M, Gori M, Pitino A, et al. Basal CD34+ cell count predicts peripheral blood stem cell mobilization in healthy donors after administration of granulocyte colony-stimulating factor: a longitudinal, prospective, observational, single-center, cohort study. Biol Blood Marrow Transplant. 2017; 23(7): 1215-1220. doi:10.1016/j.bbmt.2017.03.024.
11. Okano A, Ashihara E, Shimazaki C, et al. Predictive parameters for granulocyte colony-stimulating factor-induced peripheral blood stem cell mobilization. J Clin Apher. 2008; 23(6): 179-184. doi:10.1002/jca.20179.
12. Pelus LM, Bian H, King AG, Fukuda S. Neutrophil-derived MMP-9 mediates synergistic mobilization of hematopoietic stem and progenitor cells by the combination of G-CSF and the chemokines GROβ/CXCL2 and GROβT/CXCL2Δ4. Blood. 2004; 103(1): 110-119. doi:10.1182/blood-2003-04-1115. PMID:12958067.
13. Stroncek DF, Clay ME, Herr G, et al. The kinetics of G-CSF mobilization of CD34+ cells in healthy people. Transfus Med. 2003; 7(1): 19-24. doi:10.1046/j.1365-3148.1997.d01-75.x.
14. Sharma N, Sawant RB, Sen S. Optimizing pediatric peripheral blood stem cell collection. Transfus Apher Sci. 2021; 60(1): 102966.
15. Güngörer V, Yılmaz Keskin E, Fışgın T. Retrospective evaluation of children after stem cell transplantation: single center experience. J Contemp Med. 2019; 9(4): 359-364. doi:10.16899/jcm.605404.